實驗原理
根據蛋白分子量亞基的不同而分離蛋白，在樣品介質和丙烯酰胺凝膠中加入離子去污劑和強還原劑后，蛋白質亞基的電泳遷移速率主要取決于亞基分子量的大小。 實驗所用儀器
FR-200A全自動紫外與可見分析裝置 上海復日科技有限公司
電泳儀 BIO-RAD公司
TS-1型
脫色搖床 江蘇海門市其林貝爾儀器制造有限公司 實驗用試劑
低分子量蛋白Maker TAKARA 4*上樣緩沖 TAKARA
Pagn Blue protein staining solution Fermentas 試劑的配制 1. 貯液的配制 （1） 凝膠儲液
取30g丙烯酰胺+0.8g甲叉雙丙烯酰胺0.8g ,先用35ml雙蒸水溶解，攪拌，直到溶液變成透明，再用雙蒸水稀釋**100ml，過濾。棕色瓶4℃保存一個月。 （2）1 mol/l Tris-HCL (PH 8.8)
12.1g Tris(三羥甲基氨基甲烷)溶解在80ml雙蒸水中，用4mol/l鹽酸調PH**8.8。再用雙蒸水稀釋**100ml，保存在4℃冰箱。 （3）1.0 mol/l Tris-HCL (PH 6.8)
6.06g Tris溶解在40ml雙蒸水中，用用4mol/l鹽酸調PH**6.8。再用雙蒸水稀釋**50ml，保存在4℃冰箱。 （4）10%過硫酸銨（APS）
0.1g過硫酸銨+1ml雙蒸水。使用前新鮮配制（5）Tris–甘氨酸電泳緩沖液的配制（25mmol/L Tris；250mmol/L甘氨酸(pH8.3)）
30.3gTris+ 144.2g甘氨酸+ 10gSDS，雙蒸水定容**1L。 每次使用時10倍稀釋。 （6） 樣品緩沖液
使用4*SDS-PAGE loading buffer(Takara公司)，上樣緩沖與樣品比例1:3混勻，之后煮沸5min。 2. 凝膠的配制
具體步驟如下：
1、樣品制備：40 µL蛋白+5*上樣緩沖液10 µL，煮沸5 min，冷卻后放冰箱下層保存，備用
2、制膠
1） 用專用的醫用棉口罩將膠板擦拭干凈，
電泳槽清洗干凈，組裝模具。
注：必須使用專用的棉口罩擦拭膠板，且輕輕的向一個方向擦拭，以免劃壞膠板。
2） 按上表成分配制分離膠，迅速搖勻，沿膠的一邊，迅速灌入分離膠，注意勿打入氣泡，
迅速水封。 3） 放置1.5h。
4） 傾去蒸餾水，用濾紙將未倒干凈的水吸干。
5） 按上表成分配制濃縮膠，迅速搖勻，沿膠的一邊，迅速灌入濃縮膠，注意勿打入氣泡，
迅速插入齒梳。 6） 放置1h。 注：新配置的凝膠，室溫放置5h，使膠充分凝聚、混勻，之后再使用，效果更好。忌馬上電泳。
3、配制電泳緩沖及上樣
取配好的10*電泳緩沖130ml，用蒸餾水稀釋**1300ml。
將制好的凝膠用電泳夾固定**
電泳槽中。注：短板朝里。若只跑一塊膠，電泳夾的對面也必須放置一塊電泳板。
倒入電泳緩沖液，液面**短板和長板之間。 每孔上樣量**大20ul。蛋白Maker上樣量7ul。
4、 電泳
80V 45min;120V 45min。
注：若120v 45min后，溴酚藍指示劑前沿距離電泳板下端太遠，可延長電泳時間，或適當增加電壓，待跑**距電泳板下端1cm時停止電泳。 5、 剝膠
剝膠過程必須浸在蒸餾水中進行。 6、 水洗
電泳結束后，用蒸餾水洗膠三次，每次10min。 7、 染色
將膠**于
脫色搖床上，使用考馬斯亮藍染色液（fermentas公司）過夜染色。 注：考馬斯亮藍染色液的使用，請嚴格按照染色液說明上的操作步驟進行。
考馬斯亮藍染液可重復利用3次，使用一次的染液請倒回使用一次的回收瓶中，使用過兩次的染色液倒回使用兩次的回收瓶中，用滿三次才可廢棄。 8、 水洗
蒸餾水洗1-2小時，洗去背景色。拍照。 9、 清洗膠板和電泳槽。
注：清洗和擦拭膠板時，請使用專用的醫用棉口罩清洗，用水沖洗時，輕輕擦拭，將殘留的膠清洗干凈，注意不要太用力，以免劃壞膠板。洗好后，放置專用的膠架上晾干，晾干后放入相應的膠盒中。 10、
清理實驗臺，將實驗儀器擺放整齊。
